top of page

Наукові публікації

ВІДДІЛ

КРІОБІОХІМІЇ

  1. Petrenko A, Carnevale M, Somov A, Fuller B, Froghi F. Organ preservation into the 2020s: the era of dynamic intervention. Transfusion Medicine and Hemotherapy 2019;46(3):151–72. DOI: https://doi.org/10.1159/000499610

  2. Rogulska O, Tykhvynska O, Revenko O, Grischuk V, Mazur S, Volkova N, Vasyliev N, Petrenko A, Petrenko Y. Novel cryopreservation approach providing off-the-shelf availability of human multipotent mesenchymal stromal cells for clinical applications. Stem Cells International 2019; 4150690. DOI: https://doi.org/10.1155/2019/4150690

  3. Petrenko Y, Chudickova M, Vackova I, Sykova E, Pettenko A, Kubinova S. Clinically relevant solution for the hypothermic storage and transportation of human multipotent mesenchymal stromal cells. Stem Cells International. 2019; 5909524. DOI: https://doi.org/10.1155/2019/5909524

  4. Ochenashko OV, Nikitchenko YV, Petrenko OY. Multiple injections of cryopreserved fetal liver cells to ageing rats prevent age-related antioxidant system changes and increase lifespan. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2019;29(3):221–36. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo29.03.221

  5. Trufanova NA, Kovalenko IF, Petrenko OYu. Choice of vitrification mode for macroporous matrices seeded with mesenchymal stromal cells. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020;30(1):77–89. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.01.077 

  6. Zolotko K, Sukach O, Kompaniets A, Piriatinska N. Impact of combined administration of cryopreserved mesenchymal stem cells and neural cell aggregates on recovery of motor activity in rats with intracerebral hemorrhage Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020;30(2):169–77. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.02.169 

  7. Awan M, Buriak I, Fleck R, Fuller B, Goltsev A, Kerby J, Lowdell M, Mericka P, Petrenko A, Petrenko Y, Rogulska O, Stolzing A, Stacey G. Dimethyl sulfoxide: a central player since the dawn of cryobiology, is efficacy balanced by toxicity? Regenerative Medicine. 2020;15(3):1463–91. DOI: https://doi.org/10.2217/rme-2019-0145

  8. Gryshkov O, Mutsenko V, Tarusin D, Petrenko A, Glasmacher B. Coaxial alginate hydrogels: From self-assembled 3D cellular constructs to long-term storage. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(6):3096. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms22063096

  9. Prokopiuk OS, Shevchenko MV, Prokopiuk VYu, Musatova IB, Safonov RA, Prokopiuk OV. Isolation and cryopreservation of placental cells: search for optimal biotechniques in experimental and regenerative medicine Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021;31(1):82–8. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.01.082

  10. Rogulska OY, Trufanova NA, Petrenko YA, Repin NV, Grischuk VP, Ashukina NO, Bondarenko SY, Ivanov GV, Podorozhko EA, Lozinsky VI, Petrenko AY. Generation of bone grafts using cryopreserved mesenchymal stromal cells and macroporous collagen-nanohydroxyapatite cryogels. Journal of Biomedical Materials Research. 2022;110(2):489–99. DOI: https://doi.org/10.1002/jbm.b.3492

 

ВІДДІЛ

ХОЛОДОВОЇ АДАПТАЦІЇ

  1. Gulevsky OK, Schenyavsky II. Antihypoxant activity of low molecular weight fraction bovine blood cryohemolysate at different stages of ontogenesis. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2017;27(1):41–50. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo27.01.041 

  2. Gulevsky OK, Akhatova YS, Shchenyavsky II. Features of apoptosis, induced by temperature reduction. Problems of Cryobiology and Cryomedicine.2017;27(2):97–109. DOI: https://doi.org/10.15407%2Fcryo27.02.097

  3. Gulevskyy AK, Moisieieva NN, Gorina OL, Seidaliieva ZA. Effect of Oftocord gel vs Actovegin on regenerative processes following mechanical trauma to the rabbit cornea. J.ophthalmol. 2017;4:44–50. DOI: DOI: https://doi.org/10.31288/oftalmolzh201744450 

  4. Gulevsky OK, Moiseyeva NN, Gorina OL, Nikolchenko AYu, Schenyavsky I. Comparative evaluation of biological activity of fraction below 5 kDa from cattle cord blood after low-temperature storage (at –80°C) or lyophilization to treat burn wounds in rats. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020;30 (1):47–57. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.01.047 

  5. Gulevskyy AK, Akhatova YuS, Nikolchenko AYu. Cryoprotective agents  affect amino acids incorporation into total proteins in  cells of lymphoid organs and liver of experimental animals. Ukr. Biochem. J., 2020;92(5):41–9. DOI: https://doi.org/10.15407/ubj92.05.041 

  6. Gulevskyy AK, Akhatova YuS. Current concept of the structural and functional properties of alfa-fetoprotein and the possibilities of its clinical application. Biotechnologia Acta. 2021;14(1):25–37. DOI: https://doi.org/10.15407/biotech14.01.025 

  7. Shcheniavsky I. Anti-apoptotic effect of synthetic leu-enkephalin Dalargin on rat leukocytes in cold stress model in vivo. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021;31(1):3–13. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.01.003 

  8. Gulevsky O, Moisieieva N, Gorina O, Akhatova Y. Comparative evaluation of wound healing effect of cord blood low molecular weight fraction (below 5 kDa) and Actovegin drug in skin cryolesions. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021;31(2):116–26. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.02.116 

  9. Gulevskyy A.K., Akhatova Yu.S. Chorionic gonadotropine: structural heterogeneity, metabolic pathway, functions, obtaining and possibilities of clinical application. Biotechnologia Acta. 2021;14(3):5–21. DOI: https://doi.org/doi.org/10.15407/biotech14.03.005

  10. Гулевський ОК, Моісєєва НМ, Горіна ОЛ. Нейропептид кіоторфін запобігає розвитку апоптозу фібробластів лінії L929 в умовах холодового стресу. Доповіді НАН України. 2021;4:103–9. DOI: https://doi.org/10.15407/dopovidi2021.04.103

 

ЛАБОРАТОРІЯ ФІТОКРІОБІОЛОГІЇ

  1. Ivchenko TV, Vitsenya TI, Shevchenko NO, Bashtan NO, Kornienko S I. Hypothermic and low-temperature storage of garlic (Allium sativum L.) for in vitro collections. Probl Cryobiol Cryomed. 2017; 27(2):110–120. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo27.02.110

  2. Chernobay N, Kadnikova N, Kovalenko I. The role of cold adaptation in cryopreservation of Dunaliella salina Teod microalgae. Advances in Biology & Earth Sciences. 2019; 4(2):119-127. http://jomardpublishing.com/UploadFiles/Files/journals/ABES/V4N2/Chernobai%20et%20al.pdf
    Vozovyk K, Bobrova O, Prystalov A, Shevchenko N, Kuleshova L. Amorphous state stability of plant vitrification solutions. Biologija. 2020; 66(1):47–53. DOI: https://doi.org/10.6001/biologija.v66i1.4190
    Присталов АІ, Кулєшова ЛГ, Боброва ОМ, Зеленянська НМ. Ефективність метода вакуум-інфільтрації для насичення різними розчинами рослинних об’єктів трубчасто-капілярної структури. Вісник проблем біології і медицини. 2020; 158 (4): 65–9. DOI: http://dx.doi.org/10.29254/2077-4214-2020-4-158-65-69
    Shevchenko N, Kovalenko G, Kovalenko I, Stribul T. Discovery of osmotic responses of sweet potato meristems in cryoprotective solutions. Probl Cryobiol Cryomed. 2021; 31(2):180–4. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.02.180
    Prystalov A, Bobrova O, Kuleshova L. Application of vacuum infiltration in cryopreservation of isolated grape buds. Probl Cryobiol Cryomed. 2021; 31(1):51-7. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.01.051
    Чернобай НА, Возовик КД, Каднікова НГ. Порівняльний аналіз методів оцінки збереженості культур мікроводоростей Dunaliella salina Teodoresco та Chlorococcum dissectum Korshikov (Chlorophyta) після впливу стрес-факторів. Аlgologia. 2021; 31(4):353–64. DOI: https://doi.org/10.15407/alg31.04.353
    Ivchenko T, Shevchenko N, Lialiuk O, Stribul T. Influence of seed priming techniques on seedling establishment and yield of Asparagus hybrids. Biol Life Sci Forum. 2021; 4(1): 31–38. DOI: https://doi.org/10.3390/IECPS2020-08734
    Shevchenko N., Mozgovska A., Bobrova O., Bashtan N., Kovalenko G., Ivchenko T. Post-Thaw survival of meristems from in vitro sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) plants. Biol Life Sci Forum. 2021; 4(1):43–50. DOI: https://doi.org/10.3390/IECPS2020-08769
    Chernobai N, Kadnikova N, Vozovyk K, Rozanov L. Study of Osmotic Behavior of Astasia longa and Dunaliella salina Cells as an Important Stage in Developing Their Cryopreservation Protocol. Biol Life Sci Forum. 2021; 11(1):59. DOI: https://doi.org/10.3390/IECPS2021-11939 
    Shevchenko N, Miroshnichenko T, Mozgovska A, Bashtan N, Kovalenko G, Ivchenko T. Does Cryopreservation Improve the Quality of Tomato Seeds? Biol Life Sci Forum. 2021; 11(1):6. DOI: https://doi.org/10.3390/IECPS2021-11995

 

ВІДДІЛ КРІОЕНДОКРИНОЛОГІЇ

  1. Ali S, Moiseieva N, Bozhok G.  Cryopreservation of Cell Culture Derived from Dorsal Root Ganglia of Neonatal Pigs. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020; 30(2):158–168. https://doi.org/10.15407/cryo30.02.158 

  2. Globa V, Bondarenko T, Bozhok G, Samburg Y, Legach E. Biologically Active Compositions Containing Neurotrophic Factors Change the Contractile Activity of Detrusor of Rats with Infravesical Obstruction. Problems of Cryobiology and Cryomedicine,  2020;30(2):188–198. https://doi.org/10.15407/cryo30.02.188 

  3. Deng B, Pakhomov OV, Bozhok GA. Long-term effects of acute cadmium exposure on testis immune privilege. Regulatory Mechanisms in Biosystems, 2020;11(2):180–185. https://doi.org/10.15421/022027 

  4. Globa VY, Bozhok GA, Legach EI Morphological Parameters of Bladder Rats with Infravesical Obstruction with the Introduction of Biologically Active Compositions. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 2020;8:327–333.

  5. Nesteruk HV, Ustichenko VD, Alabedalkarim NM, Padalko VI, Protsenko OS, Legach IeI. Impact of Dorsal Root Ganglia Cryoextract on Histological Steatures in Dices and Contractility of Uterus in Differently Aged Rats. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021;31(3):258–267. https://doi.org/10.15407/cryo31.03.258 

  6. Shasha Li, Zhongjie Li, Lingling Fan, Ustichenko VD, Pakhomov OV, Deng Bo. Comparison between slow and rapid freezing for adrenal gland cryopreservation and xenotransplantation. Cryobiology. 2021;102:68–75. https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2021.07.011

  7. Pakhomov OV. Post-Cryo Survival of Rat Testicular Interstitial Cells in Hydroxyethyl Starch-Based Media.  Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021;31(1):070–081 https://doi.org/10.15407/cryo31.01.070 

  8. Pakhomov OV, Sidorenko OS. The impact of cryopreservation with polyvinyl alcohol on the survival and functional activity of rat testis interstitial cells. Biopolymers and Cell. 2021;37(1):14–22. http://dx.doi.org/10.7124/bc.000A48

  9. Kiroshka VV, Bozhkova YuO, Gavas AA, Rula IA, Bondarenko TP, Semko GO, Pyatikop VO. Endocrine Function of Ovarian Tissue Grafts After Normo- and Hypothermic Storage. Problems of Cryobiology and Cryomedicine, 2021;31(4):326–342. https://doi.org/10.15407/cryo31.04.326 

  10. Pobielienskyi KO, Pakhomov OV, Gurina TM, Pobielienska LA, Legach IeI., Bozhok GA, Experimental Cryoablation of Thyroid Gland with Propilthiouracyl-Induced Diffuse Hyperplasiae. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021;31(2): 168–179. https://doi.org/10.15407/cryo31.02.168

 

ЛАБОРАТОРІЯ КРІОПРОТЕКТОРІВ

  1. Dyubko TS, Pivovarenko, VG, Chekanova V V, Hvozdiuk Y V, Pakhomova YS, Kompaniets AM, Tatarets AL. (2020). Вивчення агрегації полівінілових спиртів (9 і 31 кДа) у водному розчині методом флуоресцентного зондування. Біофізичний вісник, (44), 7-17. DOI: https://doi.org/10.26565/2075-3810-2020-44-01 

  2. ТС Дюбко, ВГ Пивоваренко, ВВ Чеканова, ЮС Пахомова, ЯВ Гвоздюк, АМ Компанієць, АЛ Татарець. (2021). Дослідження взаємодії кріопротектора гліцерину та його похідних із диметилацетамідом у водному розчини методом флуоресцентних зондів Проблеми кріобіології і кріомедицини; 31 (2): 139-150. http://nbuv.gov.ua/UJRN/KrioBiol_2021_31_2_6

  3. ВВ Чеканова, ЮС Пахомова, АМ Компанієць, А Кіреєв, ЯВ Гвоздюк. Фізико-хімічні властивості та міцелоутворення розчинів полівінілового спирту різних молекулярних мас. Український журнал медицини, біології та спорту. 2021: 6(2); 242-248 режим доступу: http://nbuv.gov.ua/UJRN/ujmbs_2021_6_2_35

  4.  T. S. Dyubko, V. G. Pivovarenko, L. G. Kuleshova, V. V. Chekanova, Ya. V. Hvozdiuk, Yu. S. Pakhomova, A. M. Kompaniets, Ο. V. Falko, A. L. Tatarets The mechanism of influence of polyvinyl alcohol (9 kDa) on the formation of ice crystals in aqueous solutions Low Temperature Physics 48, 734 (2022). DOI: https://doi.org/10.1063/10.0013309

  5. Дослідження у порівняльному аспекті кріозахисної дії кріоконсервантів на основі гліцерину в комбінації з полівініловим спиртом різних молекулярних мас при швидкому охолодженні донорської крові людини. Гвоздюк Я.В. Компанієць А.М. «Вістник проблем біології і медицини» Випуск 2 Том 1 (164), 2022 рік , 89-99. https://doi.org/10.29254/2077-4214-2022-2-1-164-89-99 

  6. Oksana V Knysh, Olena Yu Isaenko, Evgeniy M Babych, Oleksandr V Pakhomov, Valentyna P Polyanska, Svitlana V Zachepylo, Iryna S Danilova Antimicrobial activity of bifidobacteria derivatives after storage in a frozen state Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2018/9/27, 28 (3) 237-248. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo28.03.237

  7. О Osetsky,TM Gurina, AL Poliakova, S Sevastianov. Thermoplastic analisis of cluster crystallization of cryoprotective solutions Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021; 31 (3) :203-212.  DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.03.203 

  8. Lysak YuS, AT Khodko Physicochemical processes in embryonic plant tissue during the transition to the state of cold anabiosis and storadge at liquid nitrogen temperature Low Temperature Physics. 2017; 43.  DOI:https://doi.org/1196–2000. 10.1063/1.5008412 

  9. Роль фазових перетворень рідина-рідина в механізмі захисту еритроцитів під час охолодження з кріоконсервантом ЦНДІГПК-115. Проблеми кріобіології і кріомедицини. 2021; 31(3): 236–48. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.03.236

  10. Книш ОВ, Ісаєнко ОЮ, Бабич ЄМ, Пахомова ОВ, Полянська ВП, Зачепило СВ, Данілова ІС, Компанієць АМ. Протимікробна активність дериватів біфідобактерій після зберігання в замороженому стані Проблеми кріобіології і кріомедицини. Т. 28 № 3. – С. 237-248. 2018. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo28.03.237

 

ВІДДІЛ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЇ КРІОМЕДИЦИНИ

  1. Гальченко С, Сандомирський Б. Екстракти кріоконсервованих фрагментів органів свиней та поросят як компонент відновної медицини. Доповіді національної академії наук України. 2017;(7):91–7. DOI: https://doi.org/10.15407/dopovidi2017.07.091 

  2. Chizh N. Physiological interpretation of heart rate variability spectral analysis data. Fiziologichnyi Zhurnal. 2019;65(2):31–42. DOI: https://doi.org/10.15407/fz65.02.031 

  3. Vlasov O, Kovalov G, Myroshnychenko M. Morphological features of a cold skin wound under the influence of an extract of cryopreserved skin fragments of piglets (experimental study). Wiad Lek. 2020;73(2):306–11. DOI: https://doi.org/10.36740/WLek202002119

  4. Chyzh M, Belozorov I, Aschabov D, Komyshanchenko D, Globa V, Marchenko L, Chyzh Y. Cryosurgical Method for Nervus Vagus Ablation in Experimental Studies. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020;30(1):90–8. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.01.090 

  5. Kovalov G, Gordiyenko E, Fomenko Y, Shustakova G, Kiporenko P, Olefirenko O. Dynamics of Freezing and Warming of Soft Tissues with Short-Term Effect on Skin with Cryoapplicator. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020;30(4):359–68. https://doi.org/10.15407/cryo30.04.359 

  6. Chyzh M, Belochkina I, Hladkykh F. Cryosurgery and physical medicine in treatment of cancer. Ukrainian journal of radiology and oncology. 2021;29(2):127–49. DOI: https://doi.org/10.46879/ukroj.2.2021.127-149 

  7. Chyzh M, Manchenko A, Trofimova A, Belochkina I. Doppler examination of aorta after therapeutic hypothermia and administering MSCs in experimental myocardial infarctiohttps. Ukrainian journal of radiology and oncology. 2021;29(1):58–69. DOI: https://doi.org/10.46879/ukroj.1.2021.58-69 

  8. Hladkykh F, Chyzh M. Modulation of meloxicam-induced changes in gastrointestinal and motor activity of the stomach by applying placenta cryoextract. Proceeding of the Shevchenko Scientific Society. Medical Sciences. 2021,64(1):84–94. DOI: https://doi.org/10.25040/ntsh2021.01.08 

  9. Hladkykh F, Chyzh M, Manchenko A, Belochkіna I, Mikhailova I. Effect of cryopreserved placenta extract on some biochemical indices of therapeutic efficiency and toxicity of diclofenac sodium in adjuvant-induced experimental arthritis. Pharmacy & Pharmacology. 2021;9(4): 278–93. DOI: https://doi.org/10.19163/2307-9266-2021-9-4-278-293 

  10. Kovalov G, Shustakova G, Gordiyenko E, Fomenko Yu, Glushchuk M. Infrared thermal imaging controls freezing and warming in skin cryoablation. Cryobiology. 2021; 103: 32–38. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2021.09.014 

 

ЛАБОРАТОРІЯ КРІОМОРФОЛОГІЇ

ВІДДІЛУ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЇ КРІОМЕДИЦИНИ

  1. Гольцев АН, Юрченко ТН, редакторы. Плацента: криоконсервирование, клиническое применение. Харьков: ФОП Бровин А.В.; 2013. 318 с.

  2. Репин НВ, Кирошка ВВ, Головко ОИ. Анализ морфологии эритроцитов и их устойчивости в зависимости от рН и ионной силы среды в условиях гипотермического хранения. Проблемы криобиологии. 2009; 19(1): 10–7.

  3. Репин НВ, Марченко ЛН, Говоруха ТП, Михайлова ИП, Манченко АА, Сандомирский БП. Морфологическое состояние тканей перикарда и створок аортального клапана свиньи, девитализированных крио- и радиационным воздействием. Проблемы криобиологии и криомедицины. 2015; 25(3): 246– 4.

  4. Grzhibovskis R, Krämer E, Bernhardt I, Kemper B, Zanden C, Repin NV, Tkachuk BV, Voinova MV. Shape of red blood cells in contact with artificial surfaces. European Biophysics J. 2016: 1–8. 

  5. Gulevskyy А К, Repin NV, Schenyavsky II. Impairment of barrier properties of erythrocyte membranes caused by low temperatures is a result of disorganization of hemoglobin supramolecular structure. CryoLetters. 2016; 37(5): 357–64.

  6. Строна ВИ, Гольцев АН, Репин НВ, Марченко ЛН, Говоруха ТП, Юрченко ТН. Морфо-функциональные особенности криоконсервированной плаценты. Lambert: Academic publishing; 2018. 80 с.

  7. Voinova MV, Repin NV, Sokol EI, Tkachuk BV, Gorelik LY. Physical processes in polymeric filters used for dialysis. J Polymers. 2019; 11(389): 52 p. DOI: https://doi.org/10.3390

  8. Репин НВ, Чиж ЮА, Марченко ЛН, Говоруха ТП. Морфологическая характеристика эндотелия аорты крыс с почечной недостаточностью после коррекции аллогенным криоэкстрактом плаценты. Український журнал медицини, біології та спорту. 2020; 5(4 (26): 379–85. DOI: https://doi.org/10.26693/jmbs 05.04.379

  9. Repin M, Chyzh Y, Marchenko L, Govorukha T., Brusentsov O. Placental cryoextract and renin-angiotensin-aldosterone system blockade mitigate renal failure in rats. Probl Cryobiol Cryomed. 2021; 31(3): 223–35.

  10. Repin N, Marchenko L, Govorukha T, Goltsev A. Opportunities of electron microscopy when solving cryobiological tasks. Retrospective analysis. Probl Cryobiol Cryomed. 2022; 32(1): 3–13.

 

ВІДДІЛ

КРІОЦИТОЛОГІЇ

  1. Zemlianskykh NG, Babijchuk LО. Modifications of proteins in membrane-cytoskeleton complex and ROS production in erythrocytes cryopreserved with PEG. Fiziol. Zh. 2021; 67 (2): 44-52. DOI: https://doi.org/10.15407/fz67.02.044

  2. Чабаненко ЕА, Орлова НВ, Шпакова НМ. Тестування стану еритроцитів людини після сумісної дії постгіпертонічного шоку та амфіфільних сполук. Доповіді Національної академії наук України. 2021; (6): 120–5. https://dopovidi-nanu.org.ua/ojs/index.php/dp/article/view/2021-6-14/2021-6-14

  3. Chabanenko O, Orlova N, Shpakova N. Impact of combined effect of penetrating and non-penetrating medium components on post-hypertonic lysis development in human erythrocytes. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020; 30(3): 236–46. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.03.236

  4. Makashova O, Mykhailova O, Zubov Р, Zubovа О, Babijchuk L. Antioxidant Glutathione Increases Resistance Of Cord Blood Nucleated Cells During Cryopreservation With Dimethyl Sulfoxides. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020; 30 (1): 58–67. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.01

  5. Shpakova N, Orlova N. About the mechanism of mammalian erythrocytes osmotic stability. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020; 30(4): 331–42. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.04.331

  6. Землянских НГ, Бабийчук ЛА, Мигунова РК. Асимметричное распределение фосфатидилсерина в мембране эритроцитов при криоконсервировании с глицеролом и полиэтиленгликолем. Вестник проблем биологии и медицины. 2019; 3(152): 50-4. DOI https://doi.org/10.29254/2077-4214-2019-3-152-50-54

  7. Aleksandrova DI, Zemlianskykh NG. Impact of Ionic Composition of Cryoprotective Medium and Cryopreservation on Human Erythrocyte Sensitivity to Mechanical Stress. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2019; 29 (4): 317–31. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo29.04.317

  8. Makashova O, Zubovа О, Zubov Р, Babijchuk L. State of Human Cord Blood Nucleated Cells After Cryopreservation with DMSO and Antioxidants and Transfer to Conditions Simulating Physiological. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2018; 28 (1): с. 39–44. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo28.01

  9. Shpakova NM, Semionova EA, Kovalenko IF, Iershova NA, Orlova NV. Morphological peculiarities of temperature and osmotic response of erythrocytes in presence of chloropromazine. Fiziol. Zh. 2017; 63(5): 62-9. DOI: https://doi.org/10.15407/fz63.05.062

  10. Semionova YA, Zemlyanskikh NG, Orlova, NV, Shpakova NM. Antihemolytic efficiency of chlorpromazine under posthypertonic shock and glycerol removal from erythrocytes after thawing. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2017; 27(1): 51-60. https://doi.org/10.15407/cryo27.01.051

 

ВІДДІЛ

КРІОФІЗІОЛОГІЇ

  1. Айдарова В.С., Наумова О.В., Ломакін І.І., Бабійчук В.Г. Структура головного мозку крис лінії SHR з генетично детермінованою артеріальною гіпертензією. Світ медицини та біології. 2018;64.2:115–119. DOI: https://doi.org/10.26724/2079-8334-2018-2-64-115-119

  2. Шило О.В., Луценко Д.Г., Карибян І.М., Ломако В.В. Адаптація до холоду впливає на розміри зон надниркових залоз у сплячих і несплячих тварин Проблеми кріобіології та кріомедицини, 2018;28(1):19–23 http://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1380/1463

  3. Айдарова В.С., Бабійчук В.Г., Кудокоцева О.В., Наумова О.В., Ломакін І І., Проценко О.С. Експериментальне обґрунтування застосування лікувальної гіпотермії та клітинної терапії при дисциркуляторній енцефалопатії у щурів типу SHR. Частина 2. Структурні зміни тканини мозку. Проблеми кріобіології та кріомедицини. 2019;29(1):58–72. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo29.01.058

  4. Ломако В.В., Шило О.В., Коваленко І.Ф. Трансформація еритроцитів крові молодих і старих щурів після загальної кріостимуляції. Фізіологічний журнал. 2019;65.1:57–65. https://fz.kiev.ua/index.php?abs=1636

  5. Бабійчук Л. В., Бабійчук В. Г. Структурні зміни міокарда старих щурів при стрес-індукованій артеріальній гіпертензії. Досягнення геронтології. 2020;10.2:109–14. DOI: https://doi.org/10.1134/S207905702002002

  6. І.І. Ломакін, О.В. Кудокоцева, В.Г. Бабійчук, Є.В. Кришталь Вплив краніоцеребральної гіпотермії та кріоконсервованої кордової крові на репродуктивну функцію самців щурів із захворюванням алкогольною інтоксикацією Проблеми кріобіології і кріомедицини. 2020;30, 4:369–379. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.04.369

  7. Шило О.В., Луценко Д.Г., Луценко О.Л., Бабійчук Г.О., Моісеєнко Ю.В. Сон в Антарктиді: від порушень сну до всіх проблем кріобіології та кріомедицини. 2020;30(1):3–23. http://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1596/1703

  8. Кулик В.В., Бабійчук В.Г. Стан вегетативної регуляції серцевого ритму у молодих та старих щурів до та після застосування різних режимів ритмічного екстремального охолодження. Досягнення в геронтології, 2021;11(1):113–9. https://www.scopus.com/record/display.uri?eid=2-s2.0-85103894508&origin=resultslist&sort=plf-f

  9. Юрчук Т., Петрушко М., Гапон А., Піняєв. В. В., Кулешова Л. Вплив кріоконсервації на морфологію сперматозоїдів у чоловіків з олігоастено-тератозооспермією. Кріобіологія. 2021;100:117–24. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2021.02.009

  10. Шило О. Ломако В., Семенченко О. Гель-хроматографічне дослідження сироватки крові щурів і хом'яків в умовах штучної та природної сплячки. Проблеми кріобіології та кріомедицини, 2021;31(3):191–202. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.03.191 http://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1738

 

ВІДДІЛ

КРІОПАТОФІЗІОЛОГІЇ

ТА ІМУНОЛОГІЇ

  1. Lutsenko ED, Ostankov MV, Bondarovich NA, Goltsev AN. Influence of application of cryopreserved placental cell suspension on indices of peripheral blood and bone marrow of animals with adjuvant arthritis. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2019; 29(1): 28-43. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo29.01.028

  2. Goltsev AM, Bondarovych MO, Dubrava TG, Babenko NM, Gaevska YuO, Ostankov MV, Buriak IA. Immunological traits of cryoablation in combination therapy of cancer. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2019; 29(4): 297–302. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo29.04.297

  3. Goltsev AM, Bondarovych MO, Babenko NM, Gaevska Yu O, Dubrava TG, Ostankov MV. Effect of different cryopreservation regimens on Ehrlich carcinoma growth. Cell Tissue Bank. 2019; 20(3): 411-21. DOI: https://doi.org/10.1007/s10561-019- 09780-9.

  4. Goltsev A, Fuller B, Bondarovich M, Babenko N, Gaevska Y, Buriak I, Dubrava T, Yampolska K, Lutsenko O, Ostankov M. COVID-19 as a Potential Target for Cryobiology and Cryomedicine. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020; 30(2): 107-31. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.02.107

  5. Goltsev A, Kalynychenko T. Umbilical cord blood stem cells: clinical application of allogeneic material, problems and perspectives of banking. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020; 30(3): 213-35. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.03.213

  6. Goltsev AM, Bondarovych MO, Babenko NM, Gaevska Y, Dubrava T, Ostankov M. Use of nanomaterials in cryobiology and cryomedicine. Problems of Cryobiology and Cryomedicine.  2020; 30(4): 313-30. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.04.313

  7. Volkova NO, Yukhta MS, Chernyshenko L, Stepanyuk LV, Sokil LV, Goltsev AM. The effects of nanobiopolymers on morphofunctional state of cryopreserved testicular tissue, (eds) O. Fesenko, L.Yatsenko, Springer, Cham. 2021: 287-99. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-030-74800-5_19

  8. Korpan NN, Goltsev AN, Dronov OI, Bondarovych MO. Cryoimmunology: Opportunities and challenges in biomedical science and practice. Cryobiology. 2021; 100: 1-11. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2021.02.005

  9. Kysielova HH, Yampolska KYe, Dubrava TH, Lutsenko OD, Bondarovych MO, Babenko NM, Gaevska YuO, Ostankov MV, Goltsev AM. Improvement of bone marrow mononuclear cells cryopreservation methods to increase the efficiency of dendritic cell production. Cryobiology. 2022; 106: 122-30. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2022.02.004

  10. Vvedenskiy D, Volkova N, Babenko N, Gaevska Yu, Yukhta M, Goltsev AM. Role of cryopreserved multipotent mesenchymal stromal cells in modulation of some indices of cell immunity in adjuvant arthritis. Reumatologia. 2022; 60(3): 213-19. DOI: https://doi.org/10.5114/reum.2022.117842

 

ВІДДІЛ

КРІОБІОЛОГІЇ

СИСТЕМИ РЕПРОДУКЦІЇ

  1. Yurchuk T, Petrushko M, Fuller B. Science of cryopreservation in reproductive medicine - Embryos and oocytes as exemplars. Early Hum Dev. 2018;126:6–9. DOI: https://doi.org/ 10.1016/j.earlhumdev.2018.08.016

  2. Petrushko M, Yurchuk T, Piniaiev V, Buderatska N. Cryopreservation of incomplete compacted morulae and preliminary biopsy of excluded fragments. Zygote. 2019;27(6):386–91. DOI: https://doi.org/10.1017/S0967199419000455

  3. Buderatska N, Gontar J, Ilyin I, Lavrinenko S, Petrushko M, Yurchuk T. Does human oocyte cryopreservation affect equally on embryo chromosome aneuploidy? Cryobiology. 2020;93:33–6

  4. Yurchuk T, Petrushkо M, Gapon A, Piniaiev V, Kuleshova L. The impact of cryopreservation on the morphology of spermatozoa in men with oligoasthenoteratozoospermia. Cryobiology. 2021;S0011-2240(21)00059–6. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2021.02

  5. Yurchuk TO, Pavlovich OV, Gapon GO, Pugovkin AY, Petrushko MP. Lipid peroxidation and DNA fragmentation in fresh and cryopreserved spermatozoa of men with different spermatogenesis state Ukr. Biochem. J. 2021;93,3, 24–29. DOI: https://doi.org/10.15407/ubj93.03.024

  6. Petrushko MP, Buderatska NO, Gontar JV, Yurchuk T. Morphological and Molecular Cytogenetic Characteristics of Giant Human Oocytes. Cytol. Genet. 2021;55:132–7. DOI: https://doi.org/10.3103/S0095452721020110

  7. Petrushko M, Yurchuk T, Todorov P, Hristova E, Piniaiev V, Isachenko E, Rahimi G, Mallmann P, Isachenko V. New method for cryoprotectant-free freezing of human oligoasthenoteratozoospremic spermatozoa with high-molecular polymer. Cryobiology. 2021;103:39–44. DOI:  https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2021.09.013

  8. Pavlovych O, Hapon H, Yurchuk T, Repin M, Marchenko L, Govorukha T, Petrushko M. Ultrastructural and Functional Characteristics of Human Spermatozoa After Cryopreservation by Vitrification. Probl Cryobiol Cryomed. 2020;30(1):24–33. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.01.024

  9. Petrushkо M, Piniaiev V,  Yurchuk T, The history of assisted reproductive technologies: from prohibition to recognition. History of science and technology. 2021;11(2):315–28. DOI: https://doi.org/10.32703/2415-7422-2021-11-2-315-328

  10. Yurchuk T. Cryopreservation of Immature Oocytes at Germinal Vesicle Stage. When Gamete Maturation Performance Seems to Be Most Appropriate? Probl. Cryobiol. Cryomed. 2021;31(2):161–7. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.02.16

 

ЛАБОРАТОРІЯ КОНСЕРВУВАННЯ ГАМЕТ

ТА ЕМБРІОНІВ

ВІДДІЛУ КРІОБІОЛОГІЇ СИСТЕМИ РЕПРОДУКЦІЇ

  1. Yurchuk T, Petrushko M, Fuller B. Science of cryopreservation in reproductive medicine - Embryos and oocytes as exemplars. Early Hum Dev. 2018;126:6–9. DOI: https://doi.org/ 10.1016/j.earlhumdev.2018.08.016

  2. Petrushko M, Yurchuk T, Piniaiev V, Buderatska N. Cryopreservation of incomplete compacted morulae and preliminary biopsy of excluded fragments. Zygote. 2019;27(6):386–91. DOI: https://doi.org/10.1017/S0967199419000455

  3. Buderatska N, Gontar J, Ilyin I, Lavrinenko S, Petrushko M, Yurchuk T. Does human oocyte cryopreservation affect equally on embryo chromosome aneuploidy? Cryobiology. 2020;93:33–6

  4. Yurchuk T, Petrushkо M, Gapon A, Piniaiev V, Kuleshova L. The impact of cryopreservation on the morphology of spermatozoa in men with oligoasthenoteratozoospermia. Cryobiology. 2021;S0011-2240(21)00059–6. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2021.02

  5. Yurchuk TO, Pavlovich OV, Gapon GO, Pugovkin AY, Petrushko MP. Lipid peroxidation and DNA fragmentation in fresh and cryopreserved spermatozoa of men with different spermatogenesis state Ukr. Biochem. J. 2021;93,3, 24–29. DOI: https://doi.org/10.15407/ubj93.03.024

  6. Petrushko MP, Buderatska NO, Gontar JV, Yurchuk T. Morphological and Molecular Cytogenetic Characteristics of Giant Human Oocytes. Cytol. Genet. 2021;55:132–7. DOI: https://doi.org/10.3103/S0095452721020110

  7. Petrushko M, Yurchuk T, Todorov P, Hristova E, Piniaiev V, Isachenko E, Rahimi G, Mallmann P, Isachenko V. New method for cryoprotectant-free freezing of human oligoasthenoteratozoospremic spermatozoa with high-molecular polymer. Cryobiology. 2021;103:39–44. DOI:  https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2021.09.013

  8. Pavlovych O, Hapon H, Yurchuk T, Repin M, Marchenko L, Govorukha T, Petrushko M. Ultrastructural and Functional Characteristics of Human Spermatozoa After Cryopreservation by Vitrification. Probl Cryobiol Cryomed. 2020;30(1):24–33. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.01.024

  9. Petrushkо M, Piniaiev V,  Yurchuk T, The history of assisted reproductive technologies: from prohibition to recognition. History of science and technology. 2021;11(2):315–28. DOI: https://doi.org/10.32703/2415-7422-2021-11-2-315-328

  10. Yurchuk T. Cryopreservation of Immature Oocytes at Germinal Vesicle Stage. When Gamete Maturation Performance Seems to Be Most Appropriate? Probl. Cryobiol. Cryomed. 2021;31(2):161–7. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.02.16

 

ВІДДІЛ

НИЗЬКОТЕМПЕРАТУРНОГО КОНСЕРВУВАННЯ

​

  1. Gordiyenko OI, Kovalenko SYe, Kovalenko IF, Ogurtsova VV, Todrin AF. Theoretical estimation of the optimum cooling rate of a cell suspension at linear freezing modes based on a two factor theory of cryodamage. CryoLetters. 2018;39(6):380–5. http://www.cryoletters.org/Abstracts/vol_39_6_2018.htm

  2. Miroshnic DB, Kovalenko IF, Shckorbatov YG. Combined action of doxorubicin and magnetic field on free calcium content in human cells. Human Journals Research Article IJPPR (International Journal of Farmacey & Pharmaceutical Research. 2019;15(3):88–96. http://ijppr.humanjournals.com/

  3. Khudyakov AN, Kuleshova LG, Zaitseva OO. Effect of Pectins on Water Crystallization Pattern and Integrity of Cells during Freezing.  Biopreservation and Biobanking, 2019;17(1):52–7. https://www.liebertpub.com/doi/abs/10.1089/bio.2018.0066

  4. Todrin AF, Smolyaninova YeI, Timofeyava OV, Popivnenko LI, Gordiyenko  OI Physical-mathematical model of substance redistribution between the cell and its hypertonic solution environment of penetrating cryoprotectants with relevance to membrane potential. Cryo-Letters. 2020;.41(4):209–5. http://www.cryoletters.org/Abstracts/vol_41_4_2020.htm

  5. Кулєшова ЛГ, Коваленко ІФ, Коваленко СЄ, Цибулько ТС, Гордієнко ОІ. Транспортні характеристики плазматичних мембран клітин перещеплювальної культури PK-15. Проблеми кріобіології і кріомедицини. 2021;31(1):14–22. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.01.014  

  6. Гордієнко ОІ, Коваленко ІФ, Коваленко СЄ, Кулєшова ЛГ, Тодрін ОФ. Теоретична оцінка оптимальної лінійної швидкості охолодження суспензії клітин PK-15. Проблеми кріобіології і кріомедицини. 2021;31(3):214–22. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.02.180 

  7. Моісєєв АІ, Коваленко ІФ, Коваленко СЄ, Божок ГА, Гордієнко ОІ. Динаміка проникання диметилсульфоксиду в клітини перещеплюваної лінії фібробластів L929 і сфероїди з них. Проблеми кріобіології і кріомедицини. 2021;3(4):316–25. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.04.316

  8. Присталов АІ, Боброва ОМ, Кулєшова ЛГ. Застосування методу вакуум-інфільтрації для кріоконсервування бруньок винограду. Проблеми кріобіології і кріомедицини. 2021;31(1):51–7. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo31.01.051

  9. Holovina K.M, Bobrova OM, Kovalenko SY, Hovorova YS, Nardid OA. Effect of ozonation on resistance of ovine and human erythrocytes. to hypothermic storage. Regul. Mech. Biosyst. 2021;12(1):6. DOI: https://doi.org/10.15421/022118

  10. Моісєєв АІ, Коваленко ІФ, Божок ГА, Гордієнко ОІ. Теоретичні підходи до визначення оптимальних режимі кріоконсервування клітинних сфероїдів різних термінів культивування. Біофіз.вісник. 2021;46:7–22. DOI: https://doi.org/10.26565/2075-3810-2021-46-01

 

ВІДДІЛ

КРІОМІКРОБІОЛОГІЇ

  1. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  2. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  3. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  4. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  5. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  6. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  7. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  8. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  9. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  10. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

 

ЛАБОРАТОРІЯ

КРІОМІКРОБІОЛОГІЇ

ВІДДІЛУ КРІОМІКРОБІОЛОІЇ

  1. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  2. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  3. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  4. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  5. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  6. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  7. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  8. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  9. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

  10. Ivanov AA, Ivanov BB, Ivanov CC, Ivanov DD. Article title article title article title article title article title article title  article titlearticle title. Journal. 2022;00:000–00. DOI: https://doi.org/00.000.000.000.00

 

ВІДДІЛ

КРІОБІОФІЗИКИ

  1. Nardid O.A., Repina S.V., Rozanova E.D., Cherkashina Y.O., Nardid E.O., Properties of aqueous-saline human placental extracts and their fractions after storage of placenta at various subzero temperatures. Journal of Experimental and Integrative Medicine  2015;5(4):172–77. DOI: https://doi.org/10.5455/jeim.231115.or.141 

  2. Нардід О.А., Черкашина Я.О., Іванов Л.В., Нардід Е.О., Ляпунов А.Н., Мамонтов В.В. Влияние пропиленгликоля и полиэтиленгликоля с молекулярной массой 1500 на микровязкость мембран эритроцитов. Проблемы криобиологии и криомедицины  2016;26(1): 35–44. DOI:  https://doi.org/10.15407/cryo26.01

  3. Rozanova S.L., Narozhnyi S.V., Nardid O.A. Influence of freezing down to 77.15 K on structure and antioxidant power of some proteins. Low Temperature Physics/Fizika Nizkikh Temperatur 2017;43(6): 898–901. DOI: https://doi.org/10.1063/1.4985979

  4. Нарожний С.В., Розанова К.Д., Боброва О.М., Нардід О.А. Антиоксидантна та антирадикальна дія екстрактів із кріоконсервованої плаценти людини. Проблеми кріобіології і кріомедицини  2018;28(4): 322–32. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo28.04

  5. Nardid O., Repina S., Bobrova E., Govorova Yu., Narozhnyi S., Rozanova E. Beneficial impact of human placenta extracts on erythrocyte membrane thermostability. Trakia Journal of science  2018;16(3): 204-11. DOI: https://doi.org/10.15547/tjs.2018.03.006

  6. Karachevtsev V.А., Kartel N.T., Ivanov L.V., Lyapunov A.N., Nardid O.A., Cherkashina Ya.О., Ivanov A.Yu. Change in the Microviscosity of Erythrocyte Membranes and Proteins in Blood Plasma after Graphene Oxide Addition. The ESR Spectroscopy Study Journal of Spectroscopy  2019;1-8. Article ID 8083207. DOI: https://doi.org/10.1155/2019/8083207

  7. Ulizko P.Yu., Bobrova O.M., Nardid O.A., Zubov P.M., Kovalenko I.F., Kuchkov V.M., Vodopianova L.A. Cryopreservation of equine and bovine erythrocytes using combined protective media. Probl Cryobiol Cryomed 2019; 29(3): 255–65. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo29.03.255

  8. Основы криобиологии и криомедицины. Уч. для студ.– под ред. Жегунова Г.Ф. и Нардида О.А. – Харьков, 2019. 616 с. URI: http://cryo.net.ua/xmlui/handle/123456789/491

  9. Holovina K. M., Bobrova O. M., Kovalenko S. Y., Hovorova, Y. S., Nardid, O. A. Effect of ozonation on resistance of ovine and human erythrocytes to hypothermic storage. Regulatory mechanisms in Biosystems  2021; 12(1): 116–20. DOI: https://doi.org/10.15421/022118

  10. Naumenko Е.Y., Shchetinskey M.I., Bobrova O.M., Narozhnyi S.V., Nardid О. А., Ulianytska A.Y., Kalashnykova M.M., Shchetinskaya I.I. Efficacy of extracts from cryopreserved placenta on third degree burns in rats. Regulatory mechanisms in Biosystems  2021; 12(4), 676–82.  DOI: https://doi.org/10.15421/022193

 

bottom of page